【文献解读】 CRISPR检测新突破:CrisprAIE引领精准检测新潮流

        快速而准确地检测核酸生物标志物对于诊断和监测传染病至关重要。传统的检测方法,如qPCR和测序,虽然有效,但受限于其复杂性、成本和时间要求。同时,尽管等温核酸扩增简化了检测过程,但常常会导致非特异性扩增和假阳性结果。基于CRISPR的诊断方法(Crispr-Dx)利用Cas12或Cas13,通过切割单链DNA或RNA来检测病毒、基因突变等多种靶标。然而,Crispr-Dx检测中的信号生成严重依赖于单链核酸的反式切割,这限制了其在复杂生物环境中的信号效率、灵敏度和稳定性。

 

 

       为了解决这一问题,研究人员开发了CrisprAIE系统。这一创新系统将CRISPR/Cas反应与多合一聚集诱导发光材料(AIEgens)相结合,通过Cas蛋白反式切割与AIEgen结合的双链DNA来增强荧光。该研究成果发表在《Nature Communications》上,题为CRISPR/Cas-mediated 'one to more' lighting-up nucleic acid detection using aggregation-induced emission luminogens。CrisprAIE在临床检测诺如病毒和SARS-CoV-2时表现出卓越的性能,无需依赖扩增方法。其诊断能力通过引入球形核酸修饰的AIEgens和便携式手机读取设备得到进一步提升。这一组合使其相比传统的CRISPR诊断方法,显著提高了灵敏度。总的来说,CrisprAIE被定位为一种多功能信号生成策略,能够大大提升现有CRISPR诊断技术的检测效率。

 

一、CRISPR驱动的AIEgen荧光信号输出

       阳离子型AIEgens通过静电相互作用与DNA链结合,激活了分子内运动的限制(RIM),从而产生增强的荧光信号。是一种典型的阳离子AIEgen,具有四个带正电的吡啶基团,可用于无标记检测双链DNA和单核苷酸多态性。与传统荧光团如FAM相比,它具有较大的斯托克斯位移和更强的抗光漂白能力。由于Cas核酸酶更偏好单链寡核苷酸,研究人员设计了ssDNA和dsDNA修饰的AIEgen探针。基于dsDNA的探针通过更有效地限制AIEgen运动,产生了更强的荧光信号,与传统方法相比,LOD降低了约80倍。这一改进归因于在dsDNA中更有效的AIEgen限制、高效的信号放大以及更高的信噪比。不仅如此,CrisprAIE在低温条件下表现出极佳的稳定性,与冻干CRISPR试剂兼容,并且可以与其他AIEgens适配。这些特点使CrisprAIE成为复杂生物系统中高灵敏度核酸检测的有前景工具。

图1 CrisprAIE检测方法示意图

 

图2 CRISPR驱动的AIEgen荧光信号输出系统构建

 

二、结合RT-RPA的CrisprAIE RNA定量检测

       CrisprAIE系统结合RT-RPA(逆转录重组酶聚合酶扩增)被开发用于高度灵敏和特异的RNA检测。它将Q-dsDNA/AIEgen-Q荧光报告与Cas12介导的检测相结合,集成了逆转录和扩增过程,实现了一管式等温RNA检测。在诺如病毒检测中,CrisprAIE系统准确识别了临床呕吐样本中的病毒RNA,结果与RT-qPCR一致,证实了其高效性和可靠性。此外,该系统的多功能性在SARS-CoV-2 RNA的定量检测中得到了进一步展示,CrisprAIE方法的AUC达到了0.969,显示其作为临床诊断中RNA定量检测工具的巨大潜力。


图3 RT-RPA与CrisprAIE结合可检测到极低浓度(10^18摩尔级)的诺如病毒RNA

 

图4 RT-RPA与CrisprAIE结合可检测到单拷贝水平的SARS-CoV-2 RNA

 

三、使用AIEgen辅助SNA报告探针提升CrisprAI的灵敏度和稳定性

       传统的线性DNA报告探针虽有效,但在生物液体中容易受到核酸酶降解,从而导致假阳性结果。相比之下,SNA/AIEgen报告探针结合了纳米颗粒和核酸探针,提供了更强的稳定性、增强的荧光猝灭效果以及更高的抗核酸酶能力。开发的SNA/AIEgen报告探针的检测限(LOD)低至55.7 fM,显著优于传统的Q-dsDNA/AIEgen-Q和Q-ssDNA-FAM探针。即使在复杂的生物样本(如血清)中,它也能保持稳定性和准确性。此外,它能够有效检测多种临床相关的目标,如诺如病毒、SARS-CoV-2和HPV,且基质干扰最小,展示了其在现场诊断中的强大性能。结合RT-RPA后,SNA@AIEgen探针进一步将SARS-CoV-2的检测灵敏度提高到0.1拷贝/µL,相较于之前的方法提高了十倍。该系统在多个批次中表现出良好的重现性和一致性,突显了其在实际病毒诊断中的可靠性。


图5 AIEgen辅助SNA报告探针增强了CrisprAIE在复杂样本中对目标DNA的检测能力

 


图6 扩展CrisprAIE以实现复杂样本中目标RNA的直接检测

 

四、扩展CrisprAIE以实现目标RNA的直接检测

       CrisprAIE系统通过使用Cas13a扩展,实现了对RNA目标的直接检测。与Cas12a需要将RNA逆转录为DNA不同,Cas13a可以直接识别RNA。基于Cas13a的CrisprAIE系统使用了在Q-dsDNA/AIEgen-Q和SNA/AIEgen报告探针中的ssRNA连接子,通过Cas13a对ssRNA的反式切割,实现了有效的RNA检测。根据使用的报告探针,CrisprAIE系统相比传统的Q-ssRNA-FAM探针提高了10到100倍的灵敏度。它成功检测了合成的RNA目标,包括诺如病毒、SARS-CoV-2和埃博拉病毒,即使在复杂的生物样本如呕吐物、咽拭子、唾液和血清中也表现出出色的检测能力。SNA/AIEgen报告探针显示出优异的抗基质干扰能力,展现了其在现场RNA目标诊断中的鲁棒性和潜力。

图7 适用于现场检测的CrisprAIE便携设备

 

五、CrisprAIE在POC检测中的应用

       与传统Crispr-Dx相比,CrisprAIE技术显著提高了检测灵敏度,同时保持了简便的检测过程,使其非常适合即时检测(POC)应用。研究人员开发了一种便携的手机CrisprAIE检测平台,配备了3D打印的机身、LED照明灯和电路装置,用于捕捉荧光图像。检测过程包括将样本加入含有RPA和CrisprAIE试剂的试管中,孵育30分钟,然后通过手机显示结果。该手机CrisprAIE检测平台的分析性能与商业Multiskan GO多模式读数仪相当,在合成RNA目标检测中具有相似的灵敏度和动态范围。相关性分析进一步证实了该检测平台在POC诊断中的可靠性。

图8 CrisprAIE与已有Crispr-Dx方法在有扩增和无扩增情况下的比较

 

       新兴传染病如的出现突显了快速可靠的现场诊断技术的迫切需求。这项工作引入了首个AIEgen增强的Crispr-Dx检测,用于灵敏准确的核酸检测,无需扩增的情况下,它可以检测到飞摩尔级别的DNA和RNA,通过等温扩增可达到阿摩尔级别的灵敏度,展现了在传染病诊断中的巨大潜力。尽管AIEgen探针提供了高信噪比和优异的抗光漂白性能等优势,但其也存在一些局限性,如复杂样本的干扰以及核酸提取的必要性。未来对CrisprAIE的改进可以利用Cas核酸酶进化、crRNA结构优化和扩增引物筛选等方面的进展。此外,改进信号报告系统,如高量子产率AIEgen和数字读取设备,也可以进一步提升其性能。

 

 

原文链接:https://doi.org/10.1038/s41467-024-52931-0

 

 

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