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CRISPR那些事儿

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FAQ

KO细胞系与基因敲除动物模型有什么区别?
KO细胞系和基因敲除动物模型都用于研究基因功能,但它们各自有不同的应用场景和优势。KO细胞系在体外实验中使用,适用于高通量筛选和细胞水平的基因功能研究。基因敲除动物模型则在体内实验中使用,适用于研究基因在整个生物体中的功能及其与其他基因和环境的相互作用。
选择载体时,应考虑实验的目的和宿主细胞的类型。例如,质粒载体常用于细菌中基因的表达或扩增,病毒载体则更适合用于哺乳动物细胞中的基因转导。除此之外,载体的启动子、复制子以及抗生素选择标记也需要根据具体需求进行选择。
艾迪基因KO细胞库有4500+株高质量KO细胞系现货可供选择,可大幅度节省您的科研时间。另外艾迪基因可提供高效、高阳性率的基因敲除定制服务,全球知名院校博士团队一对一服务。
KO细胞系可以在多种类型的细胞中应用,包括癌细胞、干细胞、原代细胞等。然而,不同类型的细胞对基因编辑的敏感性和效率可能有所不同。在某些细胞类型中,基因敲除可能更具挑战性,需要优化转染条件和选择合适的基因编辑工具。
Prime Editing是一种新型基因编辑技术,能够在不引入双链DNA断裂的情况下实现精确的基因编辑。它拥有两个核心的组分,分别是pegRNA与PEmax基因编辑酶(Cas9n-RT)。pegRNA不仅能够定位目标序列,还包含要修改的碱基信息。pegRNA与PEmax基因编辑酶(Cas9n-RT)结合后组成编辑系统后,pegRNA引导PEmax到指定的编辑位点上,切断DNA的单链,并逆转录出pegRNA中的待修改序列,然后将该序列插入到目标基因组位置中,从而实现精准的单碱基替换或小范围的插入和删除。
传统的CRISPR/Cas9技术主要通过在目标DNA上引入双链断裂,再利用细胞同源重组修复机制来实现基因编辑。这种策略有较多风险,如编辑效率和纯合概率低,容易导致随机的插入或缺失突变等。Prime Editing则不需要DNA双链断裂。Prime Editing具有Cas9n-RT编辑酶系统与pegRNA两个关键组分,可实现更为精确和安全的基因编辑,减少了脱靶效应。
艾迪基因全新升级第七代Bingo™ Prime Editing (PE7),优化编辑蛋白和RNA编辑活性。对比第五代PE技术,点突变成功率和基因编辑效率显著提升,全球知名院校博士专家团队一对一服务。
艾迪基因的Bingo™ Prime Editing 7(PE7)平台基于超过十年的基因编辑经验,结合成千上万个基因编辑CRO项目的总结、优化和提升,具有远超传统基因位点特异性突变系统的成功率。Bingo™ Prime平台采用高效的逆转录酶和精准的先导RNA设计,确保每一次点突变都能达到预期效果。
基因敲入在药物开发中发挥了重要作用。它用于靶点验证,通过将特定基因敲入细胞系或动物模型中,确认药物靶点的有效性。它还能帮助建立疾病模型,测试药物在这些模型上的疗效和安全性。基因敲入技术还支持药物筛选,通过带有敲入基因的细胞系进行高通量筛选,发现潜在药物候选分子。此外,它还能揭示药物的作用机制,优化药物结构和用法。整体而言,基因敲入技术加速了药物研发过程,并提高了治疗效果和安全性。
基因敲入技术是通过将外源基因序列插入到基因组的特定位置来实现基因功能研究或疾病治疗。艾迪基因利用先进的基因编辑工具,如CRISPR/Cas9系统,通过引导核酸酶切割目标DNA,并利用同源重组或非同源末端连接将外源基因准确插入指定位置,以实现高效且精确的基因敲入。
艾迪基因在基因敲入技术中的主要优势包括:
效果保障:我们拥有10年CRISPR基因编辑经验,全球知名院校博士专家团队一对一服务。
高精度:利用艾迪基因开发的优化工具,减少脱靶效应,提高编辑的准确性。
高效率:艾迪基因的技术平台提高了基因敲入的成功率,加快了实验进程。
定制服务:根据客户需求,提供个性化的基因敲入解决方案,以满足不同研究或治疗目标。
基因过表达指的是通过各种技术手段使某个特定基因在细胞或生物体中表达水平显著高于正常水平。这通常是通过引入额外的基因拷贝或使用强启动子驱动基因表达来实现的。
艾迪基因拥有10年CRISPR细胞辑经验,提供全球知名院校博士专家团队一对一服务。
基因过表达可以帮助研究特定基因的功能,揭示其在生物体内的作用机制。它也常用于药物筛选、疫苗开发和蛋白质生产等场景中。例如,通过过表达某个治疗蛋白,可以研究其在疾病模型中的治疗效果。
诱导多能干细胞(iPSC)是一类通过将成体细胞重新编程为多能状态的细胞。它们具有类似于胚胎干细胞的特性,能够分化为体内的几乎所有细胞类型。这种技术允许科学家在体外生成各种细胞类型用于研究和治疗,而不需要使用胚胎干细胞。
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